Efeito da fotobiomodulação das principais glândulas salivares em crianças com actividade de cárie: ensaio clínico aleatório duplo-cego
DOI:
https://doi.org/10.5585/22.2023.24591Palavras-chave:
Cárie dentária, Fotobiomodulação, Protocolo, Estudo controlado e randomizado, Fluxo salivarResumo
Contexto: A cárie dentária é uma das doenças mais prevalentes entre as crianças em todo o mundo. A saliva desempenha um papel significativo na desmineralização/remineralização da superfície dentária. Várias características salivares, como a taxa de fluxo, o pH e a capacidade de tamponamento, fornecem informações relevantes sobre o desenvolvimento de lesões de cárie. A fotobiomodulação demonstrou resultados promissores na melhoria da taxa de fluxo salivar e da capacidade de tamponamento na população adulta.
Objetivo: deste estudo foi avaliar a eficácia da fotobiomodulação das glândulas salivares principais sobre os parâmetros salivares em crianças com cárie.
Métodos: Este protocolo detalha um estudo randomizado, duplo-cego, de grupos paralelos e controlado que avaliou parâmetros salivares por meio da fotobiomodulação em crianças. Cinquenta participantes de 6 a 12 anos de idade serão divididos aleatoriamente em dois grupos: 1) grupo experimental de fotobiomodulação (G1) (n=25) e 2) grupo placebo de fotobiomodulação (G2) (n=25). A luz infravermelha será aplicada em 16 pontos intra e extraorais e o placebo, respectivamente. Amostras salivares não estimuladas serão coletadas antes e imediatamente após a aplicação, uma vez por semana, durante três semanas consecutivas. As amostras salivares serão analisadas quanto à sua taxa de fluxo, pH e capacidade de tamponamento. Os resultados primários são as diferenças nas taxas de fluxo salivar entre G1 e G2. Os resultados secundários são as diferenças no pH salivar e na capacidade de tamponamento entre G1 e G2.
Discussão: Os resultados desse ensaio clínico oferecerão evidências da eficácia da fotobiomodulação nos parâmetros salivares e apoiarão a tomada de decisões em relação a tratamentos não invasivos para o controle da cárie dentária.
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Referências
Fejerskov O. Concepts of dental caries and their consequences for understanding the disease. Community Dent Oral Epidemiol. 1997;25(1):5–12.
Pitts NB, Zero DT, Marsh PD, et al. Dental caries. Nat Rev Dis Prim. 2017;3(May).
Machiulskiene V, Campus G, Carvalho JC, et al. Terminology of Dental Caries and Dental Caries Management: Consensus Report of a Workshop Organized by ORCA and Cariology Research Group of IADR. Caries Res. 2020;54(1):7–14.
Bagramian Robert A, Garcia-Godoy Franklin VAR. The global increase in dental caries. A pending public health crisis. Am J Dent. 2009;1:3–8.
Frencken JE, Sharma P, Stenhouse L, et al. Global epidemiology of dental caries and severe periodontitis – a comprehensive review. J Clin Periodontol. 2017;44:S94–105.
Pedersen AML, Sørensen CE, Proctor GB, et al. Salivary secretion in health and disease. Vol. 45, Journal of Oral Rehabilitation. 2018. 730–746 p.
Humphrey SP, Williamson RT. A review of saliva: normal composition, flow, and function. J Prosthet Dent. 2001;85(2):162–9.
Gavião MB, Engelen L, van der Bilt A. Chewing behavior and salivary secretion. Eur J Oral Sci. 2004 Feb;112(1):19-24. doi: 10.1111/j.0909-8836.2004.00105.x. PMID: 14871189.
Tenovuo J. Salivary parameters of relevance for assessing caries activity in individuals and populations. Community Dent Oral Epidemiol. 1997;25(1):82–6.
Leone CW, Oppenheim FG. Physical and Chemical Aspects of Saliva as Indicators of Risk for Dental Caries in Humans. J Dent Educ. 2001;65(10):1054–62.
Fontana M, Zero DT. Assessing patients’ caries risk. J Am Dent Assoc. 2006;137(9):1231–9.
Chung H, Dai T, Sharma SK, et al. The Nuts and Bolts of Low-level Laser (Light) Therapy. Ann Biomed Eng. 2012;40(2):516–33.
Karu TI. Multiple roles of cytochrome c oxidase in mammalian cells under action of red and IR-A radiation. IUBMB Life. 2010;62(8):607–10.
Bashkatov AN, Genina EA, Tuchin V V. Optical properties of skin, subcutaneous, and muscle tissues: A review. J Innov Opt Health Sci. 2011;4(1):9–38.
Calles C, Schneider M, MacAluso F, et al. Infrared a radiation influences the skin fibroblast transcriptome: Mechanisms and consequences. J Invest Dermatol [Internet]. 2010;130(6):1524–36. Available from: http://dx.doi.org/10.1038/jid.2010.9.
Rojas JC, Gonzalez-Lima F. Neurological and psychological applications of transcranial lasers and LEDs. Biochem Pharmacol [Internet]. 2013;86(4):447–57. Available from: http://dx.doi.org/10.1016/j.bcp.2013.06.012.
Lončar B, Mravak Stipetić M, Baričević M, et al. The effect of low-level laser therapy on salivary glands in patients with xerostomia. Photomed Laser Surg. 2011;29(3):171–5.
Fidelix T, Czapkowski A, Azjen S, et al. Low-level laser therapy for xerostomia in primary Sjögren’s syndrome: a randomized trial. Clin Rheumatol. 2018;37(3):729–36.
Nemeth L, Groselj M, Golez A, et al. The impact of photobiomodulation of major salivary glands on caries risk. Lasers Med Sci. 2020;35(1):193–203.
Plavnik LM, De Crosa ME, Malberti AI. Effect of low-power radiation (helium/neon) upon submandibulary glands. J Clin Laser Med Surg. 2003;21(4):219–25.
Takeda Y. Irradiation effect of low‐energy laser on rat submandibular salivary gland. J Oral Pathol Med. 1988;17(2):91–4.
Valenzuela S, Lopez-Jornet P. Effects of low-level laser therapy on burning mouth syndrome. J Oral Rehabil. 2017;44(2):125–32.
Libik T V., Gileva OS, Danilov K V., et al. Management of cancer therapy-induced oral mucositis pain and xerostomia with extra- and intra oral laser irradiation. AIP Conf Proc. 2017;1882.
Louzeiro GC, Cherubini K, de Figueiredo MAZ, et al. Effect of photobiomodulation on salivary flow and composition, xerostomia and quality of life of patients during head and neck radiotherapy in short term follow-up: A randomized controlled clinical trial. J Photochem Photobiol B Biol [Internet]. 2020;209(February):111933. Available from: https://doi.org/10.1016/j.jphotobiol.2020.111933
Golež A, Frangež I, Cankar K, Frangež HB, Ovsenik M, Nemeth L. Effects of low-level light therapy on xerostomia related to hyposalivation: a systematic review and meta-analysis of clinical trials. Lasers Med Sci [Internet]. 2022;37(2):745–58. Available from: https://doi.org/10.1007/s10103-021-03392-0.
Clinicaltrials.gov
Randomizer.com
Navazesh M, Christensen CM. A Comparison of Whole Mouth Resting and Stimulated Salivary Measurement Procedures. J Dent Res. 1982;61(10):1158–62.
Navazesh M. Methods for Collecting Saliva. Ann N Y Acad Sci. 1993;72–7.
Bardow A, Vissink A. Saliva and caries development. In: Fejerskov O, Nyvad B, Kidd E. Dental Caries. 3rd ed. Oxford: Wiley Blackwell; 2015. p. 83–106.
Van Nieuw Amerongen A, Bolscher JGM, Veerman ECI. Salivary proteins: Protective and diagnostic value in cariology? Caries Res. 2004;38(3):247–53.
Pitts NB, Ismail AI, Martignon S, et al. ICCMSTM Guide for Practitioners and Educators. ICCMSTM Resour. 2014;1–84.
Martignon S, Pitts NB, Goffin G, et al. CariesCare practice guide: consensus on evidence into practice. Br Dent J. 2019;227(5):353–62.
Nyvad B, Machiulskiene V, Baelum V. Construct and predictive validity of clinical caries diagnostic criteria assessing lesion activity. J Dent Res. 2003;82(2):117–22.
Ekstrand KR, Ricketts DNJ, Longbottom C, et al. Visual and tactile assessment of arrested initial enamel carious lesions: An in vivo pilot study. Caries Res. 2005;39(3):173–7.
Drancourt N, Roger-Leroi V, Martignon S, et al. Carious lesion activity assessment in clinical practice. Evid Based Dent. 2019;20(2):39.
Vantipalli UK, Avula SSJ, Enuganti S, et al. Effect of three commercially available chewing gums on salivary flow rate and pH in caries-active and caries-free children: An in vivo study. J Indian Soc Pedod Prev Dent. 2017 Jul-Sep;35(3):254-259. doi: 10.4103/JISPPD.JISPPD_256_16. PMID: 28762353.
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